Questões de Concurso sobre Biossegurança

I e III, apenas.

III, apenas.

I, apenas.

II e IV, apenas.

C - E - E.

C - E - C.

E - C - C.

E - E - E.

Ligar a luz ultravioleta na cabine de fluxo laminar por 30 minutos tornando dispensável o uso da desinfecção com álcool 70% na base e nas laterais.

Realizar a desinfecção de superfície com álcool 70% na base e em seguida fechar o vidro protetor da cabine de fluxo laminar e ligar a luz ultravioleta por 30 minutos.

Realizar a desinfecção de superfície com álcool 70% na base e nas laterais e em seguida fechar o vidro protetor da cabine de fluxo laminar e ligar a luz ultravioleta por 15 minutos.

Utilizar movimentos circulares para limpeza da base após borrifar álcool diretamente dentro da cabine de fluxo laminar, fechando o vidro protetor e ligar a luz ultravioleta por 15 minutos.

Deve-se descartar o material logo após o uso nos sacos com o símbolo de risco biológico.

Após reencapar a agulha o material deve ser descartado no coletor rígido para perfurocortantes.

Deve-se descartar o material no coletor rígido para perfurocortantes logo após o uso, respeitando a linha pontilhada de capacidade máxima.

Após reencapar a agulha o material deve ser descartado em béquer de um litro e em seguida transferido para sacos com o símbolo de risco biológico.

Protetor facial, luvas de nitrila, jalecos de poliéster, avental criogênico e calçados fechados.

Protetor facial, luvas criogênicas, jalecos de algodão, avental criogênico e calçados fechados.

Óculos de proteção, luvas de látex, jaleco de poliéster, avental de PVC (policloreto de vinila) e calçados fechados.

Óculos de proteção, luvas de neoprene, jaleco de algodão, avental de PVC (policloreto de vinila) e calçados fechados.

Solicitar empresas especializadas para coleta de resíduos perigosos.

Neutralizar o produto com ácido clorídrico e posterior descarte em pia.

Neutralizar o produto com hipoclorito de sódio e imediato descarte.

Neutralizar o produto com amônia e posterior descarte em pia.

As paredes internas do laboratório podem ser lisas ou com reentrâncias, e devem ser revestidas com material poroso e permeável de modo a promover proteção acústica contra ruídos externos.

As bancadas destinadas à manipulação de materiais químicos e/ou biológicos devem estar demarcadas e diferenciadas das bancadas destinadas a coletas de dados.

As portas do laboratório devem ter as mesmas dimensões e materiais, de modo padronizado, sem o uso de visores transparentes, visando o controle de acesso ao espaço e a privacidade.

As salas de armazenamento temporário de resíduos não devem ter sistema de ventilação, a fim de conter o risco de contaminação biológica.

O armazenamento conjunto de ácidos minerais fortes e bases inorgânicas concentradas no mesmo compartimento é uma prática recomendada para a otimização do espaço físico e controle de estoque.

Reagentes classificados como inflamáveis devem ser armazenados em armários dotados de ventilação adequada, preferencialmente corta-fogo, e mantidos rigorosamente isolados de fontes de calor, faíscas ou agentes oxidantes.

A rotulagem técnica individual é o único critério necessário para o armazenamento, permitindo que substâncias de diferentes classes de risco sejam guardadas em qualquer estante do laboratório.

Solventes orgânicos voláteis devem ser posicionados próximos a substâncias oxidantes fortes para garantir a estabilidade química dos vapores emitidos durante a manipulação.

A mistura de peróxidos orgânicos com ácidos concentrados é considerada uma operação segura de pré-descarte, desde que realizada em pequenos volumes e em recipientes abertos na bancada.

Limpeza, seguida de desinfecção e, quando aplicável, esterilização.

Esterilização, seguida de antissepsia e finalização com assepsia.

Antissepsia química, seguida de esterilização física e desinfecção terminal.

Desinfecção de alto nível, seguida de limpeza mecânica e assepsia.

Esterilização por autoclave, seguida de assepsia de bancada e limpeza final.

O item 4 pode ser segregado em sacos plásticos de alta densidade de cor vermelha, e o item 1 deve ser descartado em recipientes de papelão sem revestimento interno.

O item 2 deve ser descartado em sacos plásticos de cor amarela, e o item 3 deve ser obrigatoriamente submetido a processo de incineração ou autoclave antes da coleta municipal.

O item 1 deve ser depositado em sacos de cor branca leitosa ou vermelha com símbolo de risco biológico, e o item 4 deve ser acondicionado em recipientes rígidos, estanques e resistentes à punctura.

O item 3 deve ser acondicionado em sacos de cor branca com identificação de substância tóxica, e o item 2 deve ser vertido diretamente em pias equipadas com caixas de gordura.

O item 1 e o item 4 podem ser acondicionados no mesmo recipiente plástico rígido, desde que ambos sejam esterilizados previamente em calor seco.

Os rótulos de soluções preparadas internamente devem conter obrigatoriamente o nome da substância, a concentração exata, a data de preparo, o responsável pela manipulação e a data de validade.

O armazenamento de substâncias químicas deve observar rigorosamente a compatibilidade entre as classes de risco, evitando a proximidade de agentes que possam reagir violentamente entre si.

A utilização de pictogramas de perigo e símbolos de risco é facultativa para reagentes de uso esporádico ou substâncias armazenadas em frascos de volume reduzido.

A manutenção de registros de utilização e calibração de equipamentos de medição é necessária para garantir a reprodutibilidade e a integridade dos ensaios laboratoriais.

Produtos com propriedades corrosivas, inflamáveis ou tóxicas devem apresentar identificação clara e visível, alertando sobre os riscos à saúde e à integridade física do manipulador.

O laboratório pode estabelecer um programa de calibração, analisado e ajustado conforme a viabilidade, a fim de manter a confiança na situação de calibração.

Quando os itens tiverem de ser armazenados ou acondicionados sob condições ambientais especificadas, essas devem ser mantidas, monitoradas e registradas nas primeiras 48h.

Na necessidade de um novo relatório, este pode ser emitido sem identificação unívoca, dispensando correlação documental com o laudo precedente, uma vez que a substituição não exige rastreabilidade formal ou vinculação.

Quando o laboratório for obrigado por lei, ou autorizado por compromissos contratuais, a divulgar informações confidenciais, o cliente ou o indivíduo interessado deve, exceto se proibido por lei, ser notificado sobre as informações fornecidas.

É um documento aplicável a todas as organizações que realizam atividades de laboratório com um quadro de funcionários superior a 10 pessoas.

a aplicação direta de inseticidas líquidos em spray sobre as asas de lepidópteros (borboletas) é a técnica padrão para prevenir o ataque de fungos e ácaros em regiões de clima tropical

o controle de umidade relativa (UR) não interfere na proliferação de pragas em coleções secas, sendo o controle da luminosidade o único fator determinante para evitar a eclosão de ovos de insetos xilófagos

espécimes que apresentam sinais de infestação devem ser mantidos juntos ao restante da coleção para que o tratamento químico por fumigação atinja todos os gavetários simultaneamente, evitando a dispersão manual das pragas

o uso de naftalina e cânfora dentro das gavetas entomológicas é atualmente o método mais recomendado pela Organização Mundial da Saúde, pois esses agentes são inofensivos à saúde humana e não reagem com as gorduras dos espécimes

caso seja detectada uma infestação ativa (presença de resíduos semelhantes a pó sob o espécime), o método físico de controle mais seguro para a integridade do material é o congelamento da amostra (em torno de -20°C a -30°C) por um período de 48 a 72 horas, em embalagem hermética

O agente biológico em questão é classificado como de Risco 3, o que exige que o laboratório opere em Nível de Biossegurança 3 (NB-3), com sistema de exaustão de ar dotado de filtros HEPA e pressão negativa em relação às áreas adjacentes.

Por se tratar de uma amostra de escarro, o patógeno é classificado como de Risco 2, sendo permitido o processamento em bancada aberta, desde que o técnico utilize Equipamentos de Proteção Individual (EPIs) básicos, como jaleco e luvas.

Imediatamente após a quebra do tubo e a formação de aerossóis, o técnico deve realizar a limpeza da centrífuga com hipoclorito de sódio a 1%, sem a necessidade de evacuar o laboratório, visando conter a propagação do bacilo.

Para a identificação inicial desse patógeno no exame direto, a técnica de coloração mais adequada é a de Gram, na qual o Mycobacterium tuberculosis será visualizado como um coco Gram-positivo devido à espessa camada de peptidoglicano em sua parede.

O transporte da amostra de escarro deve ser realizado em frascos de vidro de boca estreita, preenchidos com conservantes químicos como o formaldeído, para garantir que as micobactérias permaneçam viáveis para a cultura.

Autoclavagem (121°C por 15 min); Filtração por membrana (poros de 0,22 μm); Flambagem; Calor seco (Forno de Pasteur a 170°C por 2 h).

Pasteurização (72°C por 15 s); Filtração por membrana (poros de 0,45 μm); Esterilização química com álcool 70%; Autoclavagem (121°C por 15 min).

Calor seco (Forno de Pasteur a 170°C por 2 h); Radiação Ultravioleta; Flambagem; Fervura (100°C por 30 min).

Autoclavagem (121°C por 15 min); Autoclavagem (115°C por 10 min); Radiação Ionizante; Calor seco (Forno de Pasteur a 170°C por 2 h).

Tindalização; Filtração por membrana (poros de 0,22 μm); Imersão em Hipoclorito de Sódio; Autoclavagem (121°C por 15 min).

incubar as culturas em estufa bacteriológica comum sem controle de aerossóis.

manipular as culturas exclusivamente em cabine de segurança biológica classe II com fluxo laminar vertical e utilizar EPI adequado.

realizar as manipulações apenas após fixação química das colônias com formaldeído a 1%.

trabalhar em bancada, aberta desde que o operador utilize máscara cirúrgica comum.

utilizar capela química com fluxo descendente e manter as placas abertas para facilitar a manipulação.

A classe de risco 4 inclui agentes biológicos conhecidos por não causarem doenças no homem ou nos animais adultos sadios.

Agentes pertencentes à Classe de Risco 2 podem ser manipulados em bancadas abertas de laboratórios de acesso irrestrito, sem a necessidade de treinamento específico para os técnicos.

O nível de biossegurança 1 (NB-1) é destinado ao trabalho com agentes da classe de risco 2, que causam infecções humanas graves.

O laboratório NB-4 é indicado para aulas práticas básicas com microrganismos não patogênicos.

Todo o ar de exaustão de laboratório NB-3 deve passar por filtragem HEPA, antes de ser lançado para o exterior.

Não emissão de laudo físico simultaneamente ao resultado crítico, inviabilizando a comunicação imediata.

Falta de validação analítica do exame antes da comunicação, comprometendo a confiabilidade técnica do resultado.

Ausência de registro formal da comunicação de resultado crítico, incluindo identificação do receptor, data, hora e meio utilizado.

Uso inadequado de intervalo de referência no laudo, dificultando a interpretação clínica pelo médico solicitante.

Permitir que o pesquisador finalize a limpeza, desde que descarte corretamente o papel-toalha no lixo biológico.

Lavar a área contaminada com água em abundância e sabão neutro, pois a remoção mecânica reduz a carga biológica, evitando a necessidade de produtos químicos.

Chamar a equipe de limpeza para realizar a higienização utilizando os Equipamentos de Proteção Individual (EPIs) adequados, pois os técnicos não devem lidar diretamente com derramamentos de risco biológico.

Notificar imediatamente o supervisor, sinalizar e isolar a área do derramamento, utilizar os Equipamentos de Proteção Individual (EPIs) adequados e proceder à descontaminação da superfície com o desinfetante apropriado.

Isolar a área e aguardar alguns minutos para que o material seque antes de removê-lo, reduzindo a dispersão do agente biológico.