Questões de Concurso sobre Área: Análises Clínicas

Microscópio.

Centrífuga.

pHmetro.

Espectrofotômetro.

Agitador de Kline.

Avaliar a presença de tuberculose.

Diagnosticar hanseníase.

Triagem sorológica da sífilis.

Detectar hepatite viral.

Diagnosticar diabetes mellitus.

A creatina quinase (CK-MB) é útil, mas a troponina é mais específica e sensível, sendo o marcador de escolha para infarto do miocárdio.

A troponina é o marcador mais específico e sensível para infarto do miocárdio, detectando lesões no músculo cardíaco com grande precisão.

O ácido láctico pode estar elevado em diversas condições, mas não é um marcador específico de infarto do miocárdio.

A proteína C-reativa (PCR) é útil para identificar inflamação, mas não serve para diagnosticar infarto do miocárdio.

O colesterol total é importante para avaliar o risco cardiovascular, mas não serve para confirmar um infarto em fase aguda.

lâmina de sangue periférico utilizando corante de Leishman.

lâmina de sangue total utilizando corante Romanowsky.

imunofluorescência direta utilizando neutrófilos hipersegmentados.

imunofluorescência indireta utilizando células HEp-2.

quimioluminescência utilizando células mesoteliais.

O agente desinfetante pode ser tóxico desde que tenha um amplo espectro e que possa ser facilmente inativado pelo calor e pela luz.

O agente desinfetante sempre deve ser derivado do álcool, pois permite uma rápida evaporação evitando a contaminação do meio ambiente.

O melhor agente desinfetante a ser utilizado no laboratório clínico é o hipoclorito de sódio a 0,1% que pode ser facilmente obtido no comércio.

O agente desinfetante ideal é aquele com elevado poder oxidante, o qual pode ser amplamente utilizado no laboratório clínico, inclusive para desinfecção de vidrarias e metais.

O agente desinfetante deve apresentar amplo espectro, ação rápida, não ser afetado ou inativado por fatores ambientais, ser atóxico, de fácil manuseio e não poluente.

O resultado pode ser liberado, pois o resultado está dentro da faixa linear.

A amostra deve ser diluída até a obtenção de um resultado dentro da faixa linear para o método em uso.

A amostra deve ser concentrada e novamente analisada.

A amostra deve ser analisada por um método manual não colorimétrico com linearidade inferior a 500 mg/dL.

A dosagem deve ser repetida triplicando o volume do reagente.

Método de Faust e colaboradores: hidrotropismo negativo de larvas.

Método de Hoffman, Pons e Janer: sedimentação por força gravitacional.

Método de Ritchie: hidrotropismo positivo de larvas.

Método de Baermann-Moraes: centrífugo-sedimentação.

Método de Rugai: centrífugo-flutuação.

Métodos de flutuação, que utilizam soluções de alta densidade, são universalmente eficazes para todos os tipos de ovos de helmintos, incluindo os operculados e os inférteis de Ascaris lumbricoides.

A técnica de Baermann-Moraes é um método de concentração por sedimentação espontânea, primariamente utilizado para a detecção de cistos de protozoários em amostras fecais frescas.

Métodos de sedimentação por centrifugação, como o de Blagg (MIFC) ou Ritchie (formol-éter), são capazes de concentrar a maioria dos ovos, cistos e larvas, mas podem distorcer a morfologia de alguns cistos delicados se não realizados com cuidado.

O principal benefício dos métodos de concentração, em detrimento do exame direto a fresco, é a melhor preservação da motilidade de trofozoítos de protozoários.

Lipase e amilase.

AST, ALT e GGT.

Creatinina e ureia.

Fosfatase alcalina e ácido úrico.

Estimar a densidade de uma solução pela sua cor.

Medir a absorbância de uma substância em determinada faixa de comprimento de onda.

Controlar a temperatura durante reações.

Contar células em amostras biológicas.

Pesar 21,0 g do sal, transferir ao balão volumétrico e ajustar o volume final diretamente na marca com água destilada.

Dissolver o soluto em 1 L de água, ajustar o pH desejado com NaOH 1 mol L⁻¹ e completar para 2 L em proveta graduada.

Pesar 42,0 g do soluto, dissolver em cerca de 1,5 L de água, homogeneizar e completar o volume no balão de 2 L na temperatura de referência.

Pesar 10,5 g, diluir até 500 mL, preparar quatro alíquotas idênticas e reunir num frasco âmbar de 2 L para correção de evaporação.

Liberar os resultados, pois variações até +3 DP são aceitas pela CLIA.

Descartar todo o lote de reagentes e solicitar nova remessa ao fabricante.

Configurar novamente o fotômetro para reajustar o zero óptico.

Interromper a rotina analítica, investigar possíveis causas e repetir o controle antes de processar amostras de pacientes.

Sedimentação espontânea em tubo cônico de 50 mL seguida de inspeção microscópica direta.

Exame direto a fresco entre lâmina e lamínula, observado a 100×.

Reação imunocromatográfica de detecção de antígenos, utilizada como teste de triagem.

Microscopia de luz polarizada com coloração de Ziehl-Neelsen modificada.

A amplificação por PCR pode ser realizada em qualquer bancada do laboratório, sem necessidade de separação de áreas, pois a sensibilidade do teste não é afetada por pequenas contaminações.

A extração de DNA ou RNA pode ser feita após armazenamento prolongado das amostras em temperatura ambiente, pois isso aumenta o rendimento e a estabilidade do material genético.

A manipulação das amostras e reagentes pode ser feita simultaneamente no mesmo espaço físico, desde que o técnico utilize luvas e avental, pois o uso de equipamentos de proteção individual elimina totalmente o risco de contaminação cruzada.

O uso de controles positivos e negativos é fundamental para monitorar falhas na reação e identificar possíveis contaminações, garantindo a interpretação confiável dos resultados.

Com o uso de luvas, aventais e óculos de proteção não há necessidade de higienização das mãos antes e após a manipulação de amostras biológicas.

Todos os procedimentos que envolvem microrganismos patogênicos devem ser realizados apenas em cabines de segurança biológica Classe I, pois elas garantem proteção completa ao operador, ao produto e ao ambiente.

O descarte de resíduos biológicos líquidos pode ser realizado diretamente na pia do laboratório desde que se utilize água corrente, pois isso garante a diluição suficiente para eliminar os riscos.

A adoção de protocolos de desinfecção de superfícies, uso de equipamentos de proteção individual (EPI) e esterilização adequada de materiais são medidas essenciais para reduzir riscos biológicos em laboratórios clínicos.

V, F, F, V.

F, V, V, F.

F, V, F, V.

F, F, V, F.

A dosagem de ácido úrico no sangue pode ser útil para diagnóstico de gota, mas não é o teste ideal para avaliar a função renal.

O exame de urina tipo 1 é útil para investigar problemas renais iniciais, como proteínas na urina, mas não fornece informações completas sobre a função renal, necessitando de mais exames.

A dosagem de creatinina e a avaliação da taxa de filtração glomerular (TFG) são os exames padrão para avaliação da função renal, especialmente em pacientes com risco de insuficiência renal.

O exame de fezes não tem relação com a função renal e é mais utilizado para identificar parasitas intestinais, não condições renais.

A radiografia abdominal pode ser útil para investigar a anatomia do trato urinário, mas não serve para avaliar a função renal diretamente.

O exame de urina tipo 1 não é útil para diagnóstico de dengue, pois ele analisa o sistema urinário e não infecções virais como a dengue.

A cultura viral do sangue é difícil e demorada, por isso não é frequentemente utilizada no diagnóstico de dengue, que pode ser detectado mais rapidamente por métodos sorológicos.

O PCR é altamente sensível para detectar o RNA viral da dengue nos primeiros dias de infecção, sendo eficaz, mas o teste sorológico é preferido para detectar a resposta imunológica.

O teste sorológico para detecção de anticorpos IgM e IgG específicos para dengue é o exame de escolha, pois identifica infecção recente (IgM) ou passada (IgG) pela dengue.

O exame de fezes não tem relação com o diagnóstico de dengue, uma vez que essa é uma doença viral transmitida por mosquitos, não um parasita intestinal.

Urina.

Soro.

Líquor.

Sêmem.

Escarro.

Álcool e cloreto de sódio.

Álcool e solução fisiológica.

Álcool, água destilada e solução fisiológica.

Álcool e água destilada.

Álcool, água destilada e cloreto de sódio.