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A desinfecção consiste em um processo de eliminação de microrganismos presentes em superfícies e instrumentais, porém com menor poder letal que a esterilização, pois não destrói todas as formas de vida microbiana, principalmente os esporos. Sobre os métodos de desinfecção, é correto afirmar:
Quanto mais lisa, não porosa e simples for a superfície do instrumental, menos favorável será ao processo químico de desinfecção.
A desinfecção de nível médio deve eliminar todos os microrganismos em forma vegetativa e alguns esporos.
A desinfecção térmica automatizada não realiza desinfecção de alto nível, ou seja, não inativa bactérias vegetativas, vírus, fungos e micobactérias.
Os métodos de desinfecção podem ser físicos, por ação térmica, ou químicos, pelo uso de desinfetantes químicos.
Para a maioria dos germicidas, um pequeno tempo de contato e uma temperatura mais baixa, favorecem sua ação e aumentam seu espectro de ação.
Álcool ácido a 2% é uma nomenclatura referente a um conjunto de soluções usadas em bacteriologia, citologia e histologia compostas de álcool e de ácido clorídrico. Na histologia, é utilizado para remover o excesso de hematoxilina quando a amostra ficou muito corada. Na sua formulação, serão utilizados:
Álcool etílico 99,5% e 940mL/L, Ácido clorídrico PA 20 mL/L e água deionizada 40mL/L
Álcool metílico 85,5% e 940mL/L, Ácido clorídrico PA 20 mL/L e água deionizada 40mL/L
Álcool etílico 75,5% e 940mL/L, Ácido clorídrico PA 20 mL/L e água deionizada 40mL/L
Álcool metílico 100% e 940mL/L, Ácido clorídrico PA 20 mL/L e água deionizada 40mL/L
Álcool etílico 35% e 940mL/L, Ácido clorídrico PA 20 mL/L e água deionizada 40mL/L
A inclusão das amostras envolve um meio de inclusão em estado líquido, que ao se solidificar, forma um bloco contendo o material biológico. O meio de inclusão mais amplamente utilizado para a microscopia de luz é a parafina. Sobre a parafina, assinale a alternativa correta:
Para que os tecidos sejam infiltrados pela parafina, é preciso que se atinja seu ponto de fusão, aproximadamente 90°C, em estufa histológica.
O tempo de conservação dos blocos de parafina é curto e, por isso, geralmente, outros meios de inclusão são mais utilizados.
A parafina é pouco solúvel em álcool. Dessa maneira, faz-se necessário que o álcool presente nas peças seja substituído por um produto com o qual a parafina tenha afinidade, como o xilol.
A parafina é um produto derivado do petróleo, e sua afinidade por água permite a inclusão de tecidos muito hidratados.
Em temperaturas muito baixas, a parafina pode causar danos ao tecido, tornando as peças muito retraídas e com rigidez exagerada, dificultando sua seção.
Alguns tecidos, como ossos e dentes, apresentam consistência rígida, impossibilitando a realização posterior de cortes finos (microtomia). Para assumirem a adequada consistência para serem cortados, esses tecidos devem ser submetidos a tratamento com:
Soluções descalcificadoras ácidas
Entelan
Vários tipos de xilol
Vários tipos de álcool
Solução de Grocott férrico
Corresponde a técnica ou método de coloração especial utilizado para melhor identificação de lipídeos:
Grimellius
Sudão negro
Papanicolau
Azul da Prússia
Tricrômico de Masson
O recurso técnico utilizado para a retirada de pigmento formólico precipitado por artefato consiste em:
Imergir a lâmina contendo o corte histológico em solução de álcool-xilol, por 12 horas.
Hidratar o preparado histológico em água destilada contendo cloreto de sódio, por 24 horas.
Imergir o preparado histológico em solução de ácido fórmico, por 12 horas.
Hidratar a lâmina contendo o corte histológico em água destilada contendo carbonato de cálcio, por 24 horas.
Imergir a lâmina contendo o corte histológico em solução saturada de ácido pícrico em etanol a 95%, por 24 horas.
Em relação à etapa de inclusão do processamento técnico histológico, sabe-se que:
A qualidade da inclusão será inversamente proporcional ao grau de desidratação, clarificação e impregnação.
O fragmento parafinado deverá, incialmente, ser colocado no molde metálico que se encontra sobre a placa de resfriamento.
Submeter o fragmento parafinado a banhos de álcool corresponde a primeira etapa de recurso técnico para remover a parafina de infiltração (áreas opacas e esbranquiçadas).
O fragmento infiltrado com parafina deve ser colocado no molde metálico com a superfície a ser cortada ao micrótomo, orientada (voltada) para baixo.
Antecedendo a etapa de inclusão será necessário aguardar o resfriamento do fragmento tecidual infiltrado com parafina, evitando que o material se torne quebradiço e retraído pelo efeito da temperatura.
O termo utilizado em técnica histológica que representa, na etapa de coloração, a remoção do excesso de corante do tecido, descorando seletivamente determinada estrutura tecidual e favorecendo a sua melhor visualização, é conhecido como:
Impregnação
Diafanização
Cromatização
Diferenciação
Reforço da ação de corante pela substância mordente
Em relação às colorações especiais e seus respectivos resultados, analise as afirmativas abaixo:
I Na coloração Giemsa o citoplasma da célula se cora em rosa, o núcleo em azul e as hemácias em vermelho.
II No Mucicarmim a mucina se cora em rosa, o núcleo em preto e o fundo amarelalado.
III No Weigert as fibras elásticas se coram em marron-avermelhado.
IV No Fite os BAAR se coram em azul forte e o fundo em rosa pálido.
V Na prata metenamina de Grocott os fungos se apresentam nitidamente delineados em preto.
Estão corretas:
I, II, III e V
II, III e IV
II, IV e V
I, III, IV e V
Todas
Sobre a citologia em meio líquido (método de preparação de amostras para exame em citopatologia), analise as afirmações abaixo:
I Este método apresenta como vantagem melhor preservação celular e melhor distribuição das células analisadas (menor sobreposição celular).
II A coleta do material (cervico-vaginal) é muito similar à convencional, podendo ser realizada por meio de espátula e escova cervical.
III Corresponde a metodologia automatizada, de baixo custo.
IV Protocolo de execução simplificado quando comparado ao método convencional de preparo de esfregaços citológicos.
Estão corretas:
I e II
I e IV
I, II e III
I, III e IV
Todas
Em relação ao microscópio óptico, equipamento básico em laboratório de técnica histológica, analise as afirmações abaixo:
I Lentes objetivas e oculares compõem o sistema de ampliação óptica para observação adequada das células
II As partes mecânicas correspondem a: “pé”, “braço” e “canhão” (base, coluna e tubo)
III “Revólver” corresponde a peça giratória na qual se conectam as lentes oculares
IV Condensador: regula a quantidade de luz que entra no diafragma
V As lentes objetivas são capazes de aumentar um objeto em até 100 vezes
Estão corretas:
I, II, III e IV
I, II e IV
I, II e V
I, II, III e V
Todas
A técnica ou método de coloração especial utilizado para melhor identificação de fibras elásticas é a(o):
Levaditi
Orceína
Papanicolau
Fontana Masson
Tricrômico de Gomori
A substância química presente na fórmula da solução de formalina (10%) tamponada (neutra) é o:
Bicarbonato de sódio e sulfato de sódio
Bicarbonato de sódio e hidróxido de sódio
Bicarbonato de potássio e hidróxido de sódio
Fosfato de sódio monobásico e fosfato de sódio bibásico
Bicarbonato de potássio e fosfato de sódio bibásico
Identifique a melhor correlação entre técnica histoquímica especial e agente infeccioso identificado:
Giemsa – Fungos
Mucicarmin – H. pylori
Whartin-Starry – Giardia lamblia
Ácido periódico-Schiff (PAS) – Citomegalovírus
Ziehl-Neelsen – Bacilo ácido-álcool resistente (BAAR)
Identifique a solução fixadora de rápida penetração nos tecidos, com tempo mínimo de fixação de quatro horas:
Formalina-Álcool 95%
Formol- Cloreto de sódio
Formalina-Hidróxido de sódio
Álcool-Formalina-Ácido acético
Formalina-Fosfato de sódio monobásico
Existem diversos fixadores químicos utilizados na rotina histológica como o formol a 10%, a formalina tamponada, Bouin, Zenker, Alfac entre outros. E função dos agentes fixadores:
Pigmentar os tecidos a serem estudados.
Manter o tecido mole e tenro para resistir a s etapas seguintes do processamento.
Acelerar a autólise celular.
Obstruir a difusa o de substancias pelos tecidos
Impedir a atividade e proliferação bacteriana no tecido fixado.
Setenta por cento do organismo humano é formado por água, e essa água está presente em meio aos tecidos e no interior das células. Para o processamento dos tecidos e inclusão em parafina o tecido precisa ser desidratado gradualmente. Sobre esse processo, é CORRETO afirmar:
Para a realização da desidratação do tecido, é imprescindível o uso do histotécnico.
A desidratação realizada com óxido de propileno é indicada para amostras que serão observadas por meio de microscopia de luz.
O volume da solução desidratadora tem que ser 50 vezes maior que o volume da peça a ser estudada.
A desidratação é a etapa que precede a fixação.
O álcool etílico é o agente mais empregado na desidratação, sendo usado em uma série crescente de concentração (70%, 80%, 90% e 100%).
A coloração compreende uma etapa importantíssima para a visualização e interpretação do material citológico e histológico a ser observado em microscópios ópticos. Sobre os corantes, é correto afirmar:
O corante é o único fator que interfere na coloração da amostra.
Corantes básicos coram os elementos básicos dos tecidos.
A Hematoxilina é um corante ácido.
A Eosina é um corante básico.
Corantes básicos coram os elementos ácidos do tecido.
Ácidos concentrados são substâncias químicas que devem ser manipuladas cuidadosamente em laboratório. Para realizar a correta diluição de um ácido com concentração elevada, deve-se:
Medir os volumes necessários de água e ácido em duas provetas separadas e depois adicionar os dois líquidos, ao mesmo tempo, em um Becker aquecido.
Adicionar lentamente a água em ácido, agitando continuamente, com um bastão de vidro, até alcançar a diluição desejada.
Medir os volumes necessários de água e ácido em dois Beckers separados e depois adicionar os dois líquidos, ao mesmo tempo, em um Becker distinto.
Medir os volumes necessários de água e ácido em duas provetas separadas e depois adicionar os dois líquidos, ao mesmo tempo, em um Erlenmeyer aquecido.
Adicionar lentamente ácido em água, agitando continuamente com um bastão de vidro até alcançar a diluição desejada.
Em relação ao manejo adequado do microscópio óptico (MO) para observação de cortes histológicos, identifique a opção correta:
Durante o uso da objetiva de imersão utilizar líquido de alta refringência.
As lentes, quando sujas, devem ser higienizadas com gaze embebida em álcool hidratado.
Como procedimento inicial de observação do corte histológico, ajustar o foco com a objetiva de maior aumento.
A lâmina deve ser colocada sobre o condensador e fixada com as pinças metálicas, para obtenção de melhor foco.
O ajuste do foco no início da observação de uma lâmina contendo um corte histológico deve ser através do parafuso micrométrico e posteriormente o ajuste com o macrométrico.