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Em um laboratório de cristalografia, amostras sólidas são analisadas quanto à forma como os átomos componentes de sua estrutura se organizam no espaço. Para isso, é utilizado o fenômeno de difração que ocorre quando um feixe de raios X interage com um sólido cristalino, sofrendo espalhamento pelos planos atômicos da estrutura do material, o que resulta em um padrão de difração característico daquela amostra, gerado por interferências construtivas da radiação espalhada, como ilustrado no esquema a seguir.

Fonte da imagem: Traduzido de (Callister, 2014)
Essa interação segue a Lei de Bragg, que é representada pela equação:
𝜆 = d.sen𝜃
n.sen𝜃 = 𝜆
n 𝜆 = 2d.cos𝜃
n 𝜆 = d.sen(2𝜃)
n 𝜆 = 2d.sen𝜃
Difratometria de raios X (DRX) é uma técnica amplamente utilizada para a caracterização estrutural de materiais sólidos. Dependendo do tipo de amostra e do objetivo da análise, podem ser empregados métodos distintos: i. difratometria de pó; ii. difratometria de monocristal. Considerando as especificidades de cada um dos métodos citados, assinale a alternativa correta.
A difratometria de monocristal é utilizada apenas para metais, pois apenas esses materiais podem formar monocristais grandes o suficiente para análise.
A difratometria de pó é mais adequada para determinar a estrutura cristalina completa de uma substância do que a difratometria de monocristal, pois apresenta uma maior resolução estrutural e permite identificar a posição exata de cada átomo.
A difratometria de monocristal gera um conjunto de picos de difração em posições específicas no espaço, enquanto a difratometria de pó gera anéis concêntricos de difração devido à distribuição aleatória das orientações cristalográficas em torno do vetor de espalhamento.
A difratometria de pó fornece informações detalhadas sobre a simetria e o empacotamento atômico, enquanto a difratometria de monocristal é restrita à determinação da composição química do material.
A difratometria de monocristal não pode ser usada para resolver a estrutura de compostos orgânicos (por exemplo, macromoléculas), pois esse tipo de material não possui periodicidade cristalina suficiente para gerar padrões de difração.
A análise multiômica combina diferentes camadas de dados biológicos, como transcriptômica, proteômica, metabolômica e microbiômica, para obter uma visão mais abrangente dos fenômenos celulares e fisiológicos. No entanto, a integração desses dados apresenta desafios computacionais e estatísticos significativos, especialmente ao tentar correlacionar diferentes tipos de informações geradas por técnicas distintas. Métodos baseados em redes de interação e aprendizado de máquina têm sido amplamente explorados para facilitar essa integração e revelar padrões biológicos complexos. Assinale a abordagem que representa corretamente um método eficiente para integração e análise de dados multiômicos.
A análise multiômica pode ser realizada simplesmente combinando os valores brutos de expressão de diferentes camadas (transcriptômica, proteômica, metabolômica) sem necessidade de normalização ou ajustes estatísticos.
Como os dados proteômicos e transcriptômicos frequentemente apresentam correlação direta, a modelagem multiômica pode ser baseada unicamente na expressão gênica sem necessidade de avaliar os níveis de proteína ou metabólitos.
Métodos de integração de larga escala não são adequados para estudos multiômicos, pois cada tipo de dado requer uma análise específica e não pode ser comparado diretamente.
A integração multiômica pode ser realizada por meio de redes de interação molecular, que correlacionam dados de diferentes camadas usando métodos estatísticos e aprendizado de máquina para identificar padrões biológicos relevantes.
A análise multiômica é inviável para a maioria dos estudos biológicos devido à incompatibilidade técnica entre as diferentes plataformas de sequenciamento e espectrometria de massas.
Foi solicitado ao auxiliar de laboratório que prepare uma solução a 70% (v/v) com uso de uma proveta de 1 litro. Para isso, ele deve adicionar quanto do reagente (líquido concentrado) e quanto do diluente (água), respectivamente?
700 mL – 300 mL.
300 mL – 700 mL.
70 mL – 330 mL.
70 mL – 1 L.
0,7 L – 1 L.
Um laboratório adequadamente limpo e organizado reduz os riscos biológicos aos manipuladores. Por isso, ter conhecimento sobre os processos realizados para diminuir total ou parcialmente a carga de microrganismos é de extrema importância. Qual é o processo que elimina todas as formas de vida microbiana de um instrumento, inclusive os esporos bacterianos, mediante uso de autoclave?
Esterilização.
Limpeza.
Desinfecção.
Antissepsia.
Higienização.
Com relação a técnica de imunohistoquímica (IHQ), assinale a alternativa correta quanto à sua aplicação e princípio.
A IHQ detecta ácidos nucleicos em tecidos por meio de sondas fluorescentes que se ligam especificamente às sequências de interesse.
A IHQ utiliza anticorpos marcados com enzimas ou fluorocromos, sendo empregada principalmente para sequenciar proteínas em amostras biológicas.
Permite detectar alterações genômicas diretamente em tecidos, sendo essencial para estudos de mutações específicas.
A técnica é baseada na marcação de células viáveis em culturas de tecidos e na quantificação de sua proliferação.
É baseada na hibridização de anticorpos com antígenos presentes nos tecidos, permitindo a localização e quantificação de proteínas específicas em cortes histológicos.
Este método de esterilização utiliza calor seco, que promove a desnaturação de proteínas e a oxidação celular, mediante a exposição dos materiais a temperaturas elevadas (geralmente entre 160 ᴼC e 180 ᴼ C) por tempo definido, eliminando progressivamente bactérias, vírus e fungos. Com base na descrição, assinale o método de esterilização correspondente:
Vapor de Óxido de etileno.
Câmara UV.
Peróxidos.
Autoclave.
Estufa.
Durante uma coleta venosa em um paciente, foram solicitados os seguintes exames: hemograma, hemocultura, coagulograma, ureia e creatinina. Considerando a solicitação de exames do paciente acima e as diretrizes de ordem de “draw”, assinale a alternativa que representa a ordem correta dos tubos a serem coletados.
Frasco de hemocultura, tubo para soro (seco), tubo com EDTA e tubo com citrato.
Tubo seco, frasco para hemocultura, tubo com citrato e tubo com EDTA.
Fasco para hemocultura, tudo com fluoreto de sódio, tubo seco e tubo com EDTA.
Frasco para hemocultura, tubo com citrato, tubo para soro (seco), tubo com EDTA.
Tubo seco, frasco para hemocultura, tubo com EDTA e tubo com fluoreto de sódio.
As técnicas de semeadura consistem em transferir uma amostra de microrganismos de um material (como secreções e urina) para meio de cultura, a fim de permitir seu crescimento e análise. Sobre o tema, analise as assertivas abaixo.
I. A técnica do esgotamento tem por finalidade a obtenção de colônias isoladas.
II. A semeadura por picada em profundidade, feita em ágar semissólido, pode ser usada para avaliar a motilidade bacteriana e servir como prova auxiliar na identificação.
III. A semeadura quantitativa é muito utilizada para urocultura, visto a contagem de unidades formadoras de colônias (UFC) é essencial para orientação do diagnóstico.
IV. Para realizar a hemocultura, é suficiente semear o sangue coletado diretamente em meio de cultura sólido pela técnica de esgotamento.
V. A semeadura por espalhamento com swab na superfície do ágar visa obter crescimento confluente, sendo amplamente utilizada para a realização de testes de suscetibilidade por disco-difusão.
É correto o que se afirma apenas em:
II e IV.
I, IV e V.
I, II e III.
III, IV e V.
I, II, III e V.
As classes de risco de biossegurança são definidas a partir dos agentes biológicos que afetam o homem, os animais e as plantas, considerando fatores como o grau de patogenicidade, o modo de transmissão, a disponibilidade de medidas preventivas e a gravidade das doenças que podem causar. Considerando as classes de risco existentes, assinale a alternativa correta:
Classe de risco 1 corresponde a ambientes estéreis, como salas limpas e cabines de exaustão, não é permitida a presença de qualquer quantidade de agente biológico, independentemente do seu grau de virulência, garantindo-se assim a manutenção das condições assépticas.
Classe de risco 3 inclui os agentes biológicos que possuem capacidade de transmissão, em especial por via respiratória, e que causam doenças em humanos ou animais potencialmente letais, para as quais existem usualmente medidas profiláticas e terapêuticas. Exemplos: Ebola e Varíola
Classe de risco 2 abrange agentes biológicos que podem causar infecções em humanos ou animais, com baixa capacidade de disseminação e para os quais existem medidas profiláticas e terapêuticas eficazes. Exemplos: Schistosoma mansoni e vírus da rubéola.
Classe de risco 4 engloba agentes biológicos com alta capacidade de transmissão, especialmente por via respiratória ou de origem desconhecida. Não existem medidas profiláticas ou terapêuticas eficazes, e esses agentes causam doenças graves em humanos e animais, com grande potencial de disseminação. Exemplos: Bacillus anthracis e Vírus da Imunodeficiência Humana (HIV).
Classe de risco 4 inclui os agentes biológicos conhecidos por não causarem doenças no homem ou nos animais adultos sadios. Exemplos: Lactobacillus spp. e Bacillus subtilis.
Método parasitológico bastante utilizado, que consiste em misturar uma amostra de fezes com água, filtrar e deixar em repouso. Permite a identificação de ovos e cistos, pois, por serem mais pesados, sedimentam no fundo do recipiente, permitindo a sua coleta e posterior análise no microscópio. Com base nessa descrição, assinale o método correspondente:
Método de Faust
Método de Willis
Método de Kato-Katz
Método de Baermann-Moraes
Método de Hoffman, Pons e Janer.
A microscopia de fluorescência é uma ferramenta essencial na investigação de amostras biológicas e químicas, permitindo a marcação seletiva de estruturas celulares. Considerando os princípios de excitação e emissão de fluoróforos e as aplicações dessa técnica, assinale a alternativa correta.
O processo de fluorescência ocorre quando a molécula excitada emite fótons em um comprimento de onda sempre mais curto do que o da luz incidente, resultando em maior energia emitida.
Fluoróforos, como a rodamina ou a fluoresceína, são insensíveis a variações de pH, temperatura ou disponibilidade de oxigênio, mantendo suas propriedades inalteradas em qualquer ambiente celular.
A microscopia de fluorescência convencional baseia-se no uso de filtros que separam a luz de excitação da luz emitida, possibilitando a detecção seletiva do sinal fluorescente.
Técnicas baseadas em fluorescência são atualmente obsoletas em biologia celular, sendo substituídas quase integralmente por métodos interferométricos de imagem.
Todos os fluoróforos emitem luz exatamente no mesmo comprimento de onda, independentemente da sua estrutura química ou do ambiente em que estão inseridos.
Deseja-se adquirir espectros de 13C-RMN com resolução de 1 Hz/ponto em uma janela espectral de 100 ppm em um espectrômetro com campo magnético tal que a frequência de Larmor de 13C é de 100 MHz. O número de pontos no FID mais próximo para satisfazer essas condições é
4096.
8000.
16000.
20000.
32768.
RMN ¹H 1D (unidimensional) para metabolômica sofre com uma limitação considerável. Qual é a principal vantagem do uso da espectroscopia de RMN 2D J-resolvida (JRES) em análise metabololômica?
O tempo de aquisição do JRES é significativamente menor, permitindo uma análise mais rápida das amostras.
O JRES aumenta a sensibilidade do experimento, eliminando a necessidade de funções de janela que reduzem o ruído.
O JRES dispersa as ressonâncias sobrepostas em uma segunda dimensão, separando o deslocamento químico e o acoplamento J para reduzir o congestionamento espectral.
O método JRES corrige completamente as linhas de forma com torção de fase (phase-twisted lineshapes), resultando em uma quantificação absoluta livre de erros.
O JRES fornece espectros que são independentes do pH da amostra, tornando a preparação da amostra mais simples.
O experimento de ROESY revela qual tipo de informação?
Acoplamento escalar (J) entre átomos.
Proximidade espacial entre átomos.
Anisotropia do deslocamento químico do sinal observado.
Conexão por ligação química entre átomos.
Coeficientes de difusão translacional das espécies presentes em solução.
Qual é a principal vantagem de usar uma Sonda Criogênica (CryoProbe) em espectroscopia de RMN?
Aumenta a resolução do espectro, estreitando as linhas espectrais.
Aumenta a intensidade do campo magnético principal do espectrômetro.
Diminui drasticamente o ruído térmico nos componentes eletrônicos da sonda, resultando em um grande aumento na relação sinal-ruído (S/N), em geral proporciona uma melhora de 4 vezes na sensibilidade.
Permite que a amostra seja resfriada a temperaturas criogênicas, solidificando-a para análise de estado sólido.
Acelera o tempo de relaxamento T1 dos núcleos, permitindo uma repetição mais rápida dos pulsos.
No microscópio confocal, a presença do pinhole é essencial para diferenciar esse sistema de um microscópio de fluorescência convencional. Sobre seu funcionamento, é correto afirmar:
O pinhole elimina parte da luz difratada pelo disco de Airy, de modo que reduzir seu diâmetro abaixo de 0,5 unidade de Airy melhora simultaneamente a resolução axial e a eficiência de coleta de fótons.
A abertura do pinhole influencia a espessura óptica da seção obtida: pinholes muito pequenos reduzem a contribuição da luz fora de foco, mas também diminuem o sinal detectado.
O pinhole atua como um filtro espectral, permitindo separar sinais de fluoróforos que emitem em comprimentos de onda próximos, o que aumenta a seletividade cromática do sistema.
O pinhole melhora a resolução lateral do microscópio porque aumenta o 𝑁𝐴 efetivo da objetiva, tornando o disco de Airy mais estreito.
O pinhole corrige aberrações esféricas e cromáticas geradas pela lente objetiva, permitindo imagens mais nítidas em diferentes profundidades da amostra.
A diferença entre COSY e TOCSY é:
TOCSY mostra distâncias interatômicas e COSY os acoplamentos internucleares.
TOCSY mostra os acoplamentos internucleares e COSY os acoplamentos homonucleares.
COSY é destinado a observar o núcleo de 13C e TOCSY para observar o núcleo de 1 H.
COSY identifica os acoplamentos entre hidrogênios que estão adjacentes em um sistema de spin, enquanto o TOCSY detecta todos os hidrogênios em um mesmo sistema de spin.
COSY depara o deslocamento químico e acoplamento em espectros de hidrogênio e TOCSY detecta todos os hidrogênios em um mesmo sistema de spin.
O experimento típico de DEPT emprega sequências de pulsos complexas, nas quais o atraso dos pulsos e o ângulo de rotação são ajustados de forma específica, resultando na geração de quatro subespectros distintos (DEPT-45, DEPT-90 e DEPT-135). Cada um desses subespectros fornece informações complementares e valiosas para a elucidação estrutural. Assim, a combinação dos experimentos de RMN 1D de 13C com NOE e DEPT permite obter as seguintes informações:
O espectro 1D de 13C usando NOE é sensível a todos os núcleos de 13C da amostra, incluindo-se carbono quaternário. O experimento DEPT-90 fornece sinal apenas de grupos CH, enquanto o DEPT-45 e o DEPT-135 fornecem sinais dos grupos CH, CH2 e CH3, sendo que os grupos CH2 aparecem como picos negativos no DEPT-135.
O espectro 1D de 13C usando NOE é sensível apenas a núcleos de 13C diretamente ligados a 1 H. O experimento DEPT-90 fornece sinal de grupos CH e de carbonos quaternários, enquanto o DEPT-45 e o DEPT-135 fornecem sinais dos grupos CH, CH2 e CH3, sendo que os grupos CH2 aparecem como picos negativos no DEPT-135.
O espectro 1D de 13C usando NOE é sensível a todos os núcleos de 13C da amostra incluindo-se carbono quaternário. O experimento DEPT-90 fornece sinal de grupos CH e carbonos quaternários, enquanto o DEPT-45 e o DEPT-135 fornecem sinais dos grupos CH, CH2 e CH3, sendo que os grupos CH2 aparecem como picos negativos no DEPT-135.
O espectro 1D de 13C usando NOE é sensível a todos os núcleos de 13C da amostra incluindo-se carbono quaternário. O experimento DEPT-90 fornece sinal apenas de grupos CH, enquanto o DEPT-45 e o DEPT-135 fornecem sinais dos grupos CH2 e CH3, sendo que os grupos CH2 aparecem como picos negativos no DEPT-135.
O espectro 1D de 13C usando NOE é sensível a todos os núcleos de 13C da amostra incluindo-se carbono quaternário. O experimento DEPT-90 fornece sinal de carbonos quaternários e de grupos CH, enquanto o DEPT-45 e o DEPT-135 fornecem sinais dos grupos CH2 e CH3, sendo que os grupos CH2 aparecem como picos negativos no DEPT-135.
O espectro de RMN de 1H de uma dada amostra em meio de DMSO-d6 apresenta um sinal residual do solvente em 2,5 ppm como um quinteto (1:2:3:2:1). Qual espécie química contribui para o aparecimento desse sinal?
CD3-SO-CD3.
CH2D-SO-CD3.
CH3-SO-CD3.
CHD2-SO-CD3.
CH3-SO-CH3.