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Para técnicas histológicas especiais, usa-se o tampão PBS, composto por fosfato de sódio dibásico (Na2HPO4) anidro, fosfato de sódio monobásico (NaH2 PO4) anidro, cloreto de sódio (NaCl) e água destilada. Sobre esse reagente, analise as seguintes proposições.
1) Geralmente é utilizado para manter um pH fisiológico, durante as lavagens do protocolo técnico.
2) É extremamente necessário para realizar a fixação da amostra na lâmina de vidro.
3) Favorece a autólise celular quando utilizado por muito tempo.
4) É também utilizado para diluição de soluções.
Está(ão) correta(s), apenas:
1 e 2.
1 e 4.
2 e 3.
2 e 4.
3 e 4.
Para confecção do bloco de parafina, é necessário utilizar:
cassete.
xilol.
formalina a 10%.
saca-bocado.
lâmina de vidro.
Em ambulatórios, consultórios e hospitais, retiram-se cirurgicamente amostras de tecido, órgãos ou conjunto de órgãos, as quais são encaminhadas aos laboratórios. Acerca dos processos de recebimento de amostras biológicas, assinale a alternativa correta.
As amostras devem ser catalogadas, encaminhadas para análise macroscópica e posteriormente embebidas em parafina para análise microscópica.
As amostras devem ser recebidas fixadas em formalina a 20% preparada imediatamente após o procedimento cirúrgico.
As amostras devem ser catalogadas e retiradas da solução de formol, para não acontecer autólise no tecido biológico.
As lâminas para fixação das amostras embebidas em parafina devem ser higienizadas e sem qualquer tratamento prévio, como a silanização.
Ao catalogar as amostras, é necessário verificar histórico familiar do paciente, doenças preexistentes e medicamentos utilizados, para uma melhor análise microscópica e diagnóstica.
A clivagem de amostras biológicas:
é ideal para fragmentar tecidos grandes e necrosados.
é necessária para economizar reagentes utilizados no preparo histológico.
favorece o aumento de superfície exposta aos corantes de rotina utilizados.
é necessária para diminuir os campos de visão na microscopia de luz.
favorece o aumento da impregnação de substâncias utilizadas no preparo histológico.
Sobre corantes histológicos, assinale a alternativa correta.
São utilizados para determinar o tipo de tecido em que é feita a análise.
São escolhidos por sua afinidade para regiões contidas no compartimento celular.
São ferramentas utilizadas para verificar a qualidade do fixador utilizado na amostra.
São reagentes que podem impedir a degeneração e necrose tecidual.
São direcionadores para o diagnóstico de tumores malignos, como o câncer de mama.
Qual o objetivo da clarificação histológica?
Fixar a amostra biológica na parafina.
Remover gordura normalmente presente na amostra.
Inibir o processo de autólise celular.
Desidratar a amostra biológica.
Modificar a coloração da amostra, para melhor análise.
Sobre o método de montagem de uma lâmina histológica após coloração, assinale a alternativa correta.
É necessário uso de xilol para clarificar o tecido, seguido da desidratação com álcool
É necessário o uso de álcool para a desidratação e de xilol para a clarificação do tecido.
A durabilidade da lâmina é garantida pela qualidade do xilol e da lamínula utilizada.
O uso do Entellan é necessário para desidratar o tecido e conservá-lo.
É recomendado apenas o uso do Bálsamo do Canadá para conservação do tecido.
Acerca das técnicas de coloração que são necessárias para as análises citológicas e histológicas, assinale a alternativa correta.
A eosina é um corante básico que tem afinidade por regiões básicas celulares.
A eosina tem a mesma função do corante azul de metileno.
A hematoxilina tem maior afinidade por compartimentos celulares basofílicos.
A hematoxilina tem afinidade a moléculas de glicogênio citoplasmático.
A hematoxilina e o azul de metileno são corantes ácidos.
Uma das colorações mais utilizadas na rotina do laboratório de Histopatologia é:
Weigert.
orceína.
hematoxilina.
azul de metileno.
reativo de Schiff.
O reagente utilizado para realizar a retirada de parafina tecidual é:
formol.
álcool.
álcool-ácido.
xilol.
formaldeído.
Para cortar amostras de tecido congeladas em nitrogênio líquido, utiliza-se:
micrótomo.
micrótomo rotativo.
criostato.
ultramicrótomo.
micrótomo de corrediça.
Diante de um laudo histopatológico de tumor maligno, a conduta correta é:
avisar imediatamente ao paciente e a seus familiares sobre o diagnóstico.
direcionar o resultado para fase pós-analítica seguindo aspectos bioéticos laboratoriais.
encaminhar, imediatamente, a amostra para uma segunda análise.
realizar procedimentos como extração de DNA, para averiguar mutações genéticas.
contatar o serviço de oncologia para informar que há um novo paciente.
O que há em comum entre as técnicas de imuno-histoquímica e imunocitoquímica é o uso de:
xilol para fixação das amostras biológicas.
anticorpos para averiguar expressão de proteínas.
corantes como eosina, PAS e azul de metileno.
bisturi para realizar clivagem das amostras biológicas.
reagente de Schiff para contracorar o núcleo celular.
Em relação aos símbolos de biossegurança, analise a figura abaixo e assinale a alternativa que contempla a sequência correta.

I. Explosivo, II. Radiação ionizante, III. Tóxico
I. Radiação ionizante, II. Explosivo, III. Corrosivo
I. Radiação ionizante, II. Corrosivo, III. Explosivo
I. Explosivo, II. Tóxico, III. Corrosivo
I. Explosivo, II. Radiação Ionizante, III. Corrosivo
Após receber uma biópsia, a conduta correta do técnico de Histologia é:
averiguar a presença de algum corpo estranho no frasco, como tesoura ou bisturi.
realizar a retirada da amostra biológica e a análise microscópica.
realizar o cadastro da amostra e seguir com a análise macroscópica.
realizar um questionário socioeconômico e cultural com o paciente ou com o responsável.
armazenar a amostra em álcool a 100% para iniciar o processo de desidratação.
Para realizar cortes de uma amostra congelada (biópsia por congelamento), é necessário utilizar:
micrótomo.
nitrogênio líquido.
criostato.
freezer.
estufa a 25°C.
Acerca do controle de qualidade na manipulação de amostras biológicas, assinale a alternativa correta.
O fragmento de parafina deve ser posto em água morna e posteriormente fixado na lâmina de vidro.
A amostra biológica deve ser colocada em formalina após 24 horas da incisão cirúrgica.
Os blocos de parafina devem ser armazenados a 60°C, para conservação.
O congelamento de amostras biológicas para análise histopatológica deve acontecer no freezer a -1°C.
É importante realizar a desidratação iniciando com álcool a 100% até chegar a 70%.
Em relação ao condicionamento e à identificação da amostra, assinale a alternativa correta.
Os frascos que acondicionam as amostras biológicas devem ter boca larga, boa vedação e pouco fixador.
As amostras biológicas devem ser condicionadas em xilol, em frasco de vidro identificado com lápis ou etiqueta protegida por material plástico.
Após 2 horas embebidas no fixador, as amostras podem seguir para o processamento de rotina.
A amostra deve ficar submersa no líquido fixador por, no mínimo, 24 horas, para melhor fixação do tecido.
Frascos de plástico e de soro fisiológico também são indicados para armazenar amostras biopsiadas.
A desidratação tecidual é obtida com o emprego dos seguintes reagentes e concentrações:
álcool, de 70 a 100%.
álcool, de 100 a 70%.
xilol e álcool, a 100%.
álcool a 70% e álcool-ácido 1/1.
álcool a 100% e formalina a 10%.
Para assepsia do chão em um laboratório, é indicado utilizar:
álcool a 90%.
álcool a 70%.
hipoclorito a 3%.
hipoclorito a 90%.
hipoclorito a 10%.