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O diagnóstico laboratorial de pacientes com manifestação hemorrágica inicia-se por testes de triagem que identificam alterações na hemostasia primária e secundária. Sobre os exames de triagem para avaliação das coagulopatias, marque V para as afirmativas verdadeiras e F para as falsas.
( ) As amostras devem ser coletadas em tubos contendo 3,2% de citrato de sódio (109 mM) na proporção de 9 partes de sangue e uma parte de anticoagulante. Concentrações excessivas de citrato, que pode levar a resultados incorretos nos testes de tempo de protrombina (TP) e tempo de tromboplastina parcial ativada (TTPA).
( ) O TP é um teste que avalia a atividade funcional dos fatores VII, X, V, II e do fibrinogênio.
( ) O Tempo de Trombina (TT) mede os fatores das vias intrínseca e comum da coagulação. Detecta deficiências dos fatores VIII, IX, XI e XII, pré-calicreína e cininogênio de alto peso molecular, presença de inibidores e para monitorar o uso da heparina não fracionada.
A sequência está correta em
V, V, V.
F, V, V.
V, V, F.
F, F, F.
Sabe-se que, para uma boa fixação das amostras biológicas para microscopia eletrônica, é importante que as soluções fixadoras sejam tamponadas, porque
tecidos fixados em soluções não tamponadas sofrem profundas alterações, uma vez que a acidificação da amostra precede sua fixação.
as soluções tampão asseguram a inativação de enzimas proteolíticas das amostras biológicas.
as soluções tampão auxiliam na precipitação dos íons de cálcio, aumentando a qualidade da preservação das amostras.
tecidos fixados em soluções tamponadas diminuem sua reatividade com aldeído glutárico, diminuindo a formação de artefatos indesejáveis.
Quanto aos anticoagulantes utilizados na obtenção e conservação de amostras biológicas e como eles influenciam na qualidade das análises laboratoriais, pode-se afirmar que:
Citrato de sódio e acetona são anticoagulantes eficazes na conservação das amostras e separação da fase sólida do sangue.
Heparina e EDTA não têm relevância para além da preservação de células sanguíneas em análises laboratorias.
Heparina e EDTA são anticoagulantes comuns que preservam a integridade das amostras e evitam coagulação.
Ácido clorídrico e ácido sulfúrico são os únicos anticoagulantes seguros para uso em laboratório.
Solução salina e peróxido de hidrogênio são anticoagulantes recomendados para amostras biológicas.
Fatores como temperatura e pH do meio de reação devem ser controlados para garantir a eficácia do processo de síntese em questão.
Certo
Errado
Em processos de fermentação, é recomendado que a temperatura seja mantida na faixa entre 25 ºC e 36 ºC; temperaturas inferiores retardam o processo, enquanto temperaturas superiores favorecem a evaporação do álcool e contribuem para o surgimento de contaminações.
Certo
Errado
Em um laboratório, é necessário preparar 1000 ml de HCl 1N a partir de uma solução concentrada de HCl (solução 36,5% HCl a 20 ºC) com densidade = 1,19g/cm3, pH= 2 e peso molecular = 36,50.
Sobre o preparo dessa solução de HCl, assinale V (verdadeiro) ou F (falso) em cada afirmativa a seguir.
( ) Para o preparo da solução, serão necessários 84ml de HCl e 1000 ml de água destilada.
( ) Para evitar acidentes no laboratório, deve-se adicionar primeiramente a água destilada e posteriormente o HCl.
( ) Para uma medição precisa do volume da solução, deve-se utilizar um becker de vidro graduado, pois essa vidraria é mais precisa em relação aos balões volumétricos e às provetas.
A sequência correta é
V – V – V.
V – F – V.
V – F – F.
F – V – V.
F – V – F.
J. M., profissional da saúde, coletou sangue do paciente para exames de glicose e lactato. O tubo utilizado continha como aditivo fluoreto de sódio, e sua tampa apresentava cor:
amarelo.
verde.
azul.
vermelho.
cinza.
A vidraria utilizada no preparo e esterilização de meio de cultura em autoclave para uso em análises microbiológicas é:
A.
B.
C.
D.
O método de coloração a seguir foi descoberto por um médico dinamarquês, em 1884. Ele realizou uma série de análises e percebeu a existência de uma coloração diferente para um tipo de microrganismos, algumas ficavam roxas e outras rosas. Dessa forma, o cientista conseguiu classificar esses microrganismos em dois grandes grupos.

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Com relação à técnica de coloração representada, assinale com V as afirmativas verdadeiras e com F as falsas.
( ) A técnica representada é a coloração de hematoxilina-eosina. Estruturas e substâncias ácidas (roxo) e estruturas e substâncias básicas (rosa).
( ) Essa técnica classifica as bactérias em Gram-positivas (roxas) e em Gram-negativas (rosas).
( ) Diferenciar a morfologia bacteriana é fundamental para execução desse exame, para isso deve-se examinar o esfregaço corado no microscópio óptico na objetiva de 100x.
( ) Na coloração apresentada na imagem, a sequência correta dos corantes é: cristal violeta, lugol, etanol-acetona e fucsina básica.
( ) Essa coloração é chamada de Gram e é um dos procedimentos de coloração mais útil no laboratório de bacteriologia. É considerado essencial na identificação das micobactérias.
Assinale a sequência correta.
V V V F F
V F F F F
F V F V V
F V V V F
Durante uma aula prática de laboratório, um estudante está observando uma amostra no microscópio óptico. Ele está utilizando uma objetiva de imersão de 100x e deseja aumentar ainda mais a resolução da imagem. Qual é a função do óleo de imersão neste cenário e por que é necessário usá-lo?
O óleo de imersão ajuda a aumentar o contraste da imagem, tornando as estruturas celulares mais visíveis. É necessário usá-lo para evitar a distorção da imagem.
O óleo de imersão ajuda a reduzir a aberração cromática, melhorando a nitidez da imagem. É necessário usá-lo para evitar a dispersão da luz.
O óleo de imersão aumenta o poder de resolução do microscópio, permitindo visualizar detalhes menores. É necessário usá-lo para evitar a perda de luz.
O óleo de imersão reduz a reflexão da luz na interface ar-objetivo, aumentando a quantidade de luz que entra no sistema. É necessário usá-lo para evitar a perda de resolução.
Assinale a afirmativa que NÃO apresenta um procedimento básico em laboratórios.
Não adicionar água a uma solução de ácido ou base concentrada para diluí-los. Sempre adicione essas soluções concentradas à água.
Utilizar jaleco de manga comprida e calçado fechado.
Não devolver nos frascos as soluções restantes, retiradas em excesso, pois podem contaminar o conteúdo do recipiente.
Consumir alimentos sólidos e líquidos em bancadas do laboratório.
Cada fase dos exames laboratoriais desempenha um papel importante no processo de geração de resultados para o diagnóstico correto de possíveis disfunções. Quando um paciente ingere um medicamento horas antes da coleta de sangue, pode impactar no resultado final. Nesse caso, a fase em que há a geração do erro é a:
pós-analítica, pois interfere na escolha do método a ser realizado
pós-analítica, pois impacta no armazenamento adequado da amostra para revalidação
pré-analítica, pois deriva do preparo inadequado do paciente para realização do exame
pré-analítica, pois o laboratório pode ajustar os valores de referência, já que a ingestão de medicamentos é contínua
O controle de qualidade (CQ) na Medicina Laboratorial é um processo estatístico usado para monitorar e avaliar o processo analítico que produz resultados de pacientes.
Em relação ao CQ, assinale a alternativa correta.
O controle de qualidade requer testes frequentes de materiais de controle de qualidade junto às amostras de pacientes, comparando esses resultados a limites e variações específicas.
O controle de qualidade requer testes frequentes de materiais de controle de qualidade separado das amostras de pacientes, comparando esses resultados a limites e variações específicas.
O controle de qualidade requer testes frequentes de materiais de controle de qualidade junto às amostras de pacientes, comparando esses resultados aos limites de referência.
O controle de qualidade requer testes frequentes de materiais de controle de qualidade separado das amostras de pacientes, comparando esses resultados aos limites de referência.
A potenciometria baseia-se na medida da diferença de potencial entre dois eletrodos que estarão em contato com a solução do analito, sendo que o potencial do eletrodo indicador varia com a concentração da espécie química de interesse, enquanto o potencial do eletrodo de referência permanece constante.
Assinale a alternativa que identifica corretamente os analitos avaliados em laboratórios clínicos pelo método potenciométrico.
Densidade urinária e proteínas.
pH e íons seletivos.
Osmolaridade sérica e reflectância.
ons seletivos e densidade urinária.
pH e osmolaridade sérica.
Estudantes de biologia estão realizando um experimento enzimático para medir a atividade da enzima amilase. Para esse experimento, eles precisam pipetar diferentes volumes de líquidos específicos. Eles têm as seguintes opções de pipetas de precisão: P20, P100, P200 e P1000. Dados os volumes que precisam ser pipetados,
I. 10 µL de solução de enzima.
II. 50 µL de tampão de fosfato.
III. 750 µL de solução salina.
assinale a alternativa que apresenta a combinação de pipetas de precisão mais recomendada para os volumes indicados.
I. P20 / II. P100 / III. P200
I. P20 / II. P200 / III. P1000
I. P20 / II. P100 / III. P1000
I. P100 / II. P200 / III. P1000
I. P100 / II. P1000 / III. P200
Em laboratório, comumente tem-se grande diversidade de utensílios. Analise os itens representados na imagem a seguir.

(BioRender.com)
Assinale a alternativa que corretamente os identifica.
I – balão de fundo redondo; II – balão de destilação; III – pipeta graduada; IV– béquer; V– kitassato; VI – pistilo; VII – proveta; VIII – pipeta volumétrica.
I – balão de fundo chato; II – balão volumétrico; III – bureta; IV – béquer; V – erlenmeyer; VI – proveta; VII – pisseta; VIII – pipeta sorológica.
I – balão de destilação; II – balão de fundo chato; III – proveta; IV – béquer; V – kitassato; VI – bureta. VII – pisseta; VIII – pipeta graduada.
I – balão de fundo chato; II – balão volumétrico; III – pipeta volumétrica; IV – béquer; V – erlenmeyer; VI – proveta; VII – almofariz; VIII – bureta.
I – balão de fundo redondo; II – balão de fundo chato; III – proveta; IV – béquer; V – erlenmeyer; VI – bureta; VII – pistilo; VIII – bureta.
Em relação aos anticoagulantes utilizados em laboratório para análises clínicas, qual das opções abaixo NÃO descreve um anticoagulante usado rotineiramente?
Heparina.
Ácido etilenodiaminotetracético (EDTA).
Fluoreto de sódio.
Oxalato de amônio.
Oxalato de sódio.
Durante um experimento de laboratório, um pesquisador utiliza a eletroforese em gel para separar fragmentos de DNA de diferentes tamanhos. Qual é o princípio básico por trás da eletroforese em gel e como ela permite a separação dos fragmentos de DNA?
Os fragmentos de DNA são separados com base em suas diferenças de polaridade, com os mais polares migrando mais rapidamente no gel do que os menos polares.
Os fragmentos de DNA são separados com base em suas diferenças de tamanho molecular, com os maiores migrando mais rapidamente no gel do que os menores.
Os fragmentos de DNA são separados com base em suas diferenças de densidade, com os mais densos migrando mais rapidamente no gel do que os menos densos.
Os fragmentos de DNA são separados com base em suas diferenças de carga elétrica, com os mais carregados migrando mais rapidamente no gel do que os menos carregados.
Sabendo da importância de manter a integridade da amostra para análise laboratorial, quais dos conservantes a seguir são os melhores para a conservação dos sedimentos urinários:
Formalina e fluoreto de sódio.
Ácido bórico e timol.
Tolueno e clorofórmio.
Clorofórmio e timol.
Ácido bórico e formalina.
Para o preparo da solução, o técnico do laboratório explicou que seria necessário:
Pesar 5 g de KCl e dissolver o soluto em 400 mL de água medidos em um balão volumétrico.
Pesar 2 g de KCl, dissolver o soluto em 200 mL de água medidos na proveta em um béquer e completar o volume para 400 mL com uso de um balão volumétrico.
Pesar 74,5 g de KCl, dissolver o soluto em 200 mL de água medidos na proveta em um béquer e completar o volume para 400 mL com uso de um balão volumétrico.
Pesar 29,8 g de KCl e dissolver o soluto em 400 mL de água medidos em um balão volumétrico.