

Seu próximo nível começa aqui
Com a Assinatura Ilimitada, você tem tudo que precisa para sua aprovação.
Com a Assinatura Ilimitada, você combina prática, teoria e método em uma única assinatura com tudo que você precisa para sua aprovação.
O processo de coagulação por aquecimento permite a solidificação de meios de cultura que utilizam bases líquidas ricas em proteínas, como o soro e o ovo. O meio de cultura enriquecido, que emprega ovos em sua formulação e que constitui o padrão tradicional para o cultivo de Mycobacterium spp., é o
MacConkey.
Cary-Blair.
Ágar Chocolate.
Löwenstein-Jensen.
Ágar Sabouraud.
Em relação às instruções para a coleta de hemoculturas, é correto afirmar:
é obrigatória a troca de agulhas entre a punção de coleta e a distribuição do sangue no frasco de hemocultura.
quanto maior o volume de sangue inoculado no meio de cultura (volume máximo de 20 ml de sangue por amostra), melhor a recuperação do microrganismo.
o frasco de hemocultura deve ser mantido em temperatura ambiente e encaminhado o mais rápido possível para o laboratório.
punções arteriais trazem benefícios na recuperação dos microrganismos quando comparadas com punções venosas.
é recomendada a técnica de coleta através de cateteres ou cânulas em relação às coletas venosas.
Em laboratório, o uso correto de vidrarias calibradas, limpas e apropriadas para cada tipo de medida é fundamental para obter soluções com concentrações exatas e para a realização de experimentos de forma segura e eficiente.
Assinale a alternativa que corretamente identifica a vidraria de volume fixo utilizada para o preparo de soluções com concentração precisa, indicado para medições exatas.
Proveta.
Bureta.
Balão volumétrico.
Béquer.
Pipeta volumétrica.
Para medir com precisão um volume fixo de líquido, como 25,0 mL de uma solução, a vidraria mais adequada é o(a):
pipeta volumétrica de 25 mL
Erlenmeyer de 125 mL
proveta de 50 mL
Becker de 50 mL
bureta de 25 mL
Considerando a prática de pesagem ou lavagem, apontar a afirmativa correta:
O uso de balanças analíticas carateriza pesagem de elevada precisão.
Balanças analíticas têm capacidade de pesagem no intervalo mínimo de 1 g e máximo até 500 g.
Balanças analíticas são utilizadas, especificamente, para pesagem de volumes reduzidos de líquidos.
A lavagem de vidrarias laboartoriais de reuso inclui lavagem obrigatória com água destilada e esterilizada, na etapa final, antes da secagem.
A respeito da prática de eletroforese envolvendo ácidos nucléicos é correto afirmar:
A eleletroforese de ácidos nucleicos é amplamente realizada em gel de bisacrilamida.
Quando submetidos a eletroforese, os ácidos nucléicos migram para o eletrodo negativo.
A eletroforese é um método no qual, sob a influência de um campo elérico, moléculas ou partículas carregadas migram na direção do eletrodo contendo cargas opostas às suas.
A corrente elétrica é uma variável a ser controlada no desenvolvimento de eletroforese. A temperatura e o tempo de desenvolvimento experimental são variáveis não controladas ou monitoradas.
O sistema Boas Práticas de Laboratório (BPL) é uma recomendação da Organização para a Cooperação e Desenvolvimento Econômico (OECD) que visa organizar os procedimentos para a condução de pesquisas, garantindo a segurança dos usuários e a proteção do meio ambiente. No Brasil, as BPL foram publicadas pelo Instituto Nacional de Metrologia, Qualidade e Tecnologia (Inmetro) por meio de normas específicas. De acordo com essa regulamentação, o conjunto de pessoas, instalações e unidades operacionais necessários para conduzir o estudo é denominado de
instalação de teste.
unidade de teste.
procedimentos operacionais padrão (POP).
programa da garantia da qualidade.
Durante o manuseio de ácido clorídrico (HCl) houve um acidente que resultou no derramamento do produto na bancada e no chão do laboratório. Quais medidas deverão ser adotadas após o ocorrido para remoção do ácido?
Lavar com água e sabão e realizar a neutralização com o sal cloreto de sódio.
Utilizar materiais absorventes inertes e realizar a neutralização com bicarbonato de sódio.
Utilizar inicialmente o papel toalha como absorvente e realizar a neutralização com hidróxido de sódio.
Utilizar hipoclorito de sódio para lavagem e realizar a neutralização com permanganato de potássio.
Nos ensaios de metais, o procedimento inicial para preparo da frascaria consiste em
esterilizar frascos e tampas em autoclave antes da lavagem química.
imergir frascos e tampas em solução de ácido clorídrico 10% por no mínimo 24 horas.
imergir frascos e tampas em solução de ácido nítrico 10% por no mínimo 48 horas.
lavar frascos e tampas com detergente enzimático 0,5% e secar em estufa a 150 °C.
enxaguar frascos e tampas com água destilada e armazenar imediatamente.
Um estagiário solicitou a ajuda de um técnico no laboratório para auxiliá-lo na centrifugação de cinco amostras, todas já devidamente colocadas nos tubos adequados para a centrífuga que seria utilizada e todas ajustadas para que tivessem exatamente o mesmo peso. Ao observar a disposição dos tubos no rotor de eixo fixo do equipamento, conforme mostrado no esquema a seguir, o técnico orientou o estagiário para que realizasse o procedimento correto antes de iniciar a centrifugação.

Qual é esse procedimento?
Adicionar tubos de centrífuga vazios em todas as posições que não contêm tubos com amostra para evitar que o rotor gire com posições vazias.
Retirar os tubos das posições 8 e 7 e reposicioná-los nas posições 2 e 4 para que as amostras fiquem posicionadas em sequência.
Remover um dos tubos e deixá-lo fora do rotor, uma vez que não é possível realizar centrifugações com número ímpar de amostras.
Adicionar outro tubo de centrífuga contendo apenas água na posição 4, e com peso idêntico aos tubos que contêm amostras.
Redistribuir as amostras em tubos de centrífuga maiores para que ocupem menos posições no rotor.
A manutenção preventiva dos equipamentos de laboratório é fundamental para assegurar precisão e confiabilidade nos resultados, garantir a conformidade com as normas técnicas e a segurança dos operadores, além de prevenir desgastes e falhas que afetam a vida útil dos aparelhos. Assinale a alternativa que indica o procedimento correto na manutenção preventiva de equipamentos comuns usados em laboratórios.
O conjunto óptico de microscópios e lupas deve ser limpo com um pano de algodão macio umidificado com água destilada imediatamente após o uso, e as partes móveis dos equipamentos lubrificadas periodicamente com vaselina líquida.
Balanças analíticas devem ser posicionadas em bancadas firmes e niveladas, calibradas periodicamente com pesos padrão certificados, e a limpeza do prato de pesagem deve ser realizada com um pincel após o uso, ou com álcool isopropílico quando necessário.
A calibração periódica dos pHmetros deve ser realizada com solução padrão pH 7,0 comercial certificada, e o eletrodo deve ser enxaguado com solução de KOH 3M após o uso antes de ser seco e armazenado com a capa protetora.
Rotores de centrífugas usados em laboratórios de microbiologia devem ser lavados periodicamente com água sanitária (hipoclorito 5%) ou autoclavados, e deixados para secar completamente em estufas a 100oC antes da reinstalação.
As lâmpadas de deutério (UV) e halogêneo (visível) dos espectrofotômetros devem ser removidas periodicamente para limpeza do sistema óptico, que deve ser realizada utilizando papel absorvente ou algodão seco.
Em relação ao armazenamento seguro de substâncias químicas em laboratórios, é correto afirmar que
ácidos fortes e bases fortes podem ser armazenados juntos, desde que mantidos fechados hermeticamente.
solventes inflamáveis devem ser armazenados em armários específicos para esse tipo de material, com ventilação adequada.
reagentes oxidantes devem ser mantidos próximos a pias, torneiras ou extintores de água como forma de prevenção de acidentes.
frascos de solventes orgânicos abertos e em uso devem ser armazenados em geladeiras ou freezers para evitar evaporação.
a incompatibilidade química deve ser considerada após a abertura do frasco.
No pronto atendimento, a glicemia capilar foi aferida em glicosímetro com controle do turno em faixa aceitável e repetida em seguida, mantendo valores próximos de 100mg/dL. No laboratório, o sangue venoso para glicose foi coletado em tubo para soro e ficou duas horas na bancada antes da centrifugação, liberando 48mg/dL. O hemograma do mesmo pedido mostrou leucocitose importante. A equipe médica pede que o laboratório esclareça a divergência. Assinalar a conduta CORRETA.
Repetir o teste na mesma amostra, emitir laudo com observação de variação analítica e manter o resultado como referência clínica do turno.
Solicitar nova coleta em tubo seco, aguardar coagulação completa e dosar glicose em soro, comparando com o valor anterior do paciente.
Aplicar fator de correção pela temperatura ambiente, recalcular a glicose estimada e registrar o ajuste no sistema para auditoria interna posterior.
Registrar o desvio pré-analítico e colher nova amostra em tubo com fluoreto, separando o plasma rapidamente para dosagem confirmatória no laboratório.
Monitorando um reservatório, o profissional responsável pela coleta precisa obter uma amostra de água em profundidade para ensaio de oxigênio dissolvido pelo método de Winkler modificado pela azida sódica. Ao preparar o procedimento, ele verifica que a amostra será encaminhada ao laboratório após a coleta. Diante dessa situação, a conduta correta do profissional deve ser realizar a amostragem
com garrafa do tipo Van Dorn, agitá-la bem, transferi-la para o frasco de análise e mantê-la refrigerada até a chegada ao laboratório.
com garrafa do tipo Van Dorn, preencher o frasco de DBO evitando contato com o ar, adicionar os reagentes indicados, fechar sem bolhas e manter ao abrigo da luz.
diretamente na superfície do reservatório, acondicioná-la em frasco plástico comum e adicionar os reagentes no laboratório.
em profundidade com garrafa do tipo Van Dorn, homogeneizá-la em balde auxiliar e transferi-la posteriormente para o frasco de DBO.
Os biólogos utilizam diversos equipamentos e instrumentos, de acordo com sua área de atuação.
Analise as afirmativas abaixo em relação aos equipamentos e instrumentos utilizados pelos biólogos.
1. Autoclave é utilizada para esterilizar instrumentos e meios de cultura através de calor e pressão, eliminando microrganismos.
2. Espectrofotômetro mede a quantidade de luz absorvida por uma amostra e é usado para quantificar proteínas, ácidos nucleicos e outras substâncias.
3. Rede de névoa é uma armadilha feita de fios finos de nylon ou poliéster, que se camuflam no ambiente para capturar aves e morcegos.
Assinale a alternativa que indica todas as afirmativas corretas.
É correta apenas a afirmativa 2.
São corretas apenas as afirmativas 1 e 2.
São corretas apenas as afirmativas 1 e 3.
São corretas apenas as afirmativas 2 e 3.
São corretas as afirmativas 1, 2 e 3.
Após o preparo de placas de Petri contendo meio de cultura sólido, um técnico observou a formação de gotículas de água na superfície do ágar durante o resfriamento. Esse excesso de condensação pode favorecer o espalhamento do inóculo e dificultar a obtenção de colônias isoladas. Para minimizar esse problema durante o armazenamento, o procedimento mais adequado é
aumentar o tempo de autoclavagem para favorecer a evaporação da água presente no meio.
armazenar as placas na posição normal (tampa voltada para cima), em temperatura ambiente e protegidas da luz.
conservar as placas em estufa bacteriológica a 37 °C até sua utilização.
congelar as placas imediatamente após a solidificação do meio.
armazenar as placas invertidas, sob refrigeração, após a completa solidificação do meio.
Na Unidade de Saúde da Família (USF), uma paciente do sexo feminino, 72 anos, procurou atendimento relatando fadiga intensa, fraqueza muscular e tonturas há aproximadamente dois meses. O médico identificou sinais sugestivos anemia e alterações metabólicas, solicitando os seguintes exames laboratoriais: Hemograma, Ferro sérico, Vitamina D, TGO (AST), TGP (ALT) e Coagulograma. Como a USF não realiza análises laboratoriais, as amostras serão encaminhadas para o Laboratório Central do município. Considerando as boas práticas de coleta, transporte e manuseio de amostras biológicas, assinale a alternativa correta.
A coleta deve ser realizada, em regra, por punção arterial, com antissepsia do local utilizando álcool 70%. A ordem de coleta dos tubos deve ser: EDTA (tampa roxa ou lilás), citrato de sódio (tampa azul-clara) e Heparina (tampa verde), homogeneizados imediatamente após a coleta. Todos os tubos devem ser corretamente identificados, mantidos na posição vertical e transportados em caixas térmicas com controle de temperatura, conforme a estabilidade dos analitos.
A coleta deve ser realizada, em regra, por punção venosa, com antissepsia do local utilizando álcool 70%. A ordem de coleta dos tubos deve ser: EDTA (tampa roxa ou lilás), citrato de sódio (tampa azul-clara) e Heparina (tampa verde), homogeneizados imediatamente após a coleta. Todos os tubos devem ser corretamente identificados, mantidos na posição horizontal e transportados em caixas térmicas com controle de temperatura, conforme a estabilidade dos analitos.
A coleta deve ser realizada por punção arterial para o coagulograma e venosa para os demais exames, com antissepsia do local utilizando álcool 70%. A ordem de coleta dos tubos deve ser: tubo com ativador de coágulo sem ou com gel separador (tampa vermelha ou amarela), EDTA (tampa roxa ou lilás) e citrato de sódio (tampa azul-clara). Todos os tubos devem ser corretamente identificados, mantidos na posição horizontal e transportados em caixas térmicas com controle de temperatura, conforme a estabilidade dos analitos.
A coleta deve ser realizada, em regra, por punção venosa, com antissepsia do local utilizando álcool 70%. A ordem de coleta dos tubos deve ser: fluoreto + EDTA (tampa cinza), tubo com ativador de coágulo sem ou com gel separador (tampa vermelha ou amarela) e EDTA (tampa roxa ou lilás). Os tubos com anticoagulantes devem ser homogeneizados imediatamente após a coleta. Todos os tubos devem ser corretamente identificados, mantidos na posição vertical e transportados em caixas térmicas com controle de temperatura, conforme a estabilidade dos analitos.
A coleta deve ser realizada, em regra, por punção venosa, com antissepsia do local utilizando álcool 70%. A ordem de coleta dos tubos deve ser: citrato de sódio (tampa azul-clara), tubo com ativador de coágulo sem ou com gel separador (tampa vermelha ou amarela) e EDTA (tampa roxa ou lilás). Os tubos com anticoagulantes devem ser homogeneizados imediatamente após a coleta. Todos os tubos devem ser corretamente identificados, mantidos na posição vertical e transportados em caixas térmicas com controle de temperatura, conforme a estabilidade dos analitos.
Durante uma atividade sobre reações químicas, os estudantes trabalharão com pequenas quantidades de substâncias, recipientes de vidro e materiais que podem liberar vapores. Antes do início da prática, o professor apresenta os riscos envolvidos, verifica as condições dos materiais, orienta sobre equipamentos de proteção e define os procedimentos para descarte dos resíduos. Durante a execução, um grupo sugere alterar a quantidade de reagentes para tornar a reação mais intensa. Considerando a segurança em atividades experimentais escolares, assinale a afirmativa CORRETA.
A intensificação da reação pode ser testada em escala reduzida, desde que o professor acompanhe diretamente o grupo responsável pela modificação experimental.
A alteração pode ser realizada quando as quantidades adicionais forem pequenas e os estudantes estiverem utilizando equipamentos de proteção adequados durante a execução.
O procedimento pode ser ajustado durante a prática quando a finalidade pedagógica for aprofundar a observação do fenômeno e os resíduos puderem ser posteriormente descartados.
A alteração proposta deve ser avaliada quanto aos riscos envolvidos, às propriedades das substâncias e às condições previstas para a atividade antes de modificações no procedimento.
A modificação pode contribuir para a investigação, sendo recomendável verificar inicialmente se os materiais disponíveis suportam a quantidade adicional de reagentes.
Em uma atividade sobre transferência de energia térmica, estudantes recebem recipientes com materiais distintos e devem investigar qual deles apresenta maior capacidade de reduzir a variação de temperatura da água durante determinado intervalo de tempo. O professor solicita que os grupos definam variáveis, mantenham condições comparáveis e registrem a temperatura em diferentes momentos. Ao final, os resultados apresentam diferenças entre os grupos. Nesse contexto, assinale a afirmativa CORRETA.
A comparação dos resultados exige considerar as condições experimentais, as variáveis controladas, os registros obtidos e as incertezas envolvidas nas medições realizadas.
A análise experimental pode comparar as curvas de temperatura obtidas pelos grupos, utilizando como referência principal o intervalo final de cada medição.
A interpretação dos resultados pode considerar a média das temperaturas registradas, pois esse procedimento reduz as diferenças produzidas pelas condições específicas de cada grupo.
A identificação do material mais eficiente pode basear-se na maior variação de temperatura observada, desde que os grupos tenham utilizado recipientes de dimensões semelhantes.
O material que apresentar maior alteração térmica pode ser considerado mais eficiente, sendo desnecessário verificar se houve diferenças entre os procedimentos adotados pelos grupos.
Em laboratórios de análise molecular, diferentes metodologias permitem identificar patógenos, mutações e perfis genéticos com alta precisão. Cada técnica apresenta princípios específicos baseados em amplificação, detecção ou hibridização de ácidos nucleicos, tornando-se ferramentas fundamentais no diagnóstico moderno.
Uma das técnicas moleculares de diagnóstico é observada no uso
da PCR para quantificar diretamente proteínas de membrana plasmática.
da Western blot para amplificar fragmentos específicos de DNA.
do sequenciamento Sanger para duplicar RNA mensageiro em larga escala.
da qPCR para detectar e medir a quantidade de sequências-alvo de DNA em tempo real.
da hibridização Southern para análise de perfis de expressão proteica.